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CRISPR-Cas9-Trainingsprogramm | 4 Tage Praxis

Praktische Schulung in Genomeditierung, Molekularbiologie und Datenauswertung

Die XTech Academy in Zusammenarbeit mit Springer Campus

Praxiskurs

Kursdetails

Überblick

Dieses intensive viertägige Praxistraining führt in die Prinzipien, Designstrategien und Laborabläufe der Genomeditierung mit CRISPR-Cas9 ein.

Der Kurs deckt den gesamten Arbeitsablauf ab – von der Theorie und der Auswahl der Zielsequenz über das gRNA-Design, die Vorbereitung der Reagenzien und Transfektionsmethoden bis hin zu DNA-Extraktion, PCR-Amplifikation, Gelelektrophorese, Datenauswertung und Fehlerbehebung.

Die Teilnehmenden erwerben sowohl theoretisches Verständnis als auch praktische Laborerfahrung mit Methoden rund um die Genomeditierung. Der Workshop kombiniert angeleitete Vorträge, Demonstrationen und praktische Laboreinheiten und vermittelt, wie CRISPR-Cas9-Experimente geplant, durchgeführt, analysiert und interpretiert werden.

Am Ende des Kurses verfügen die Teilnehmenden über ein solides Fundament in CRISPR-Cas9-Arbeitsabläufen und verstehen die entscheidenden Versuchsschritte für erfolgreiche Genomeditierungsprojekte.

Lernziele

Nach Abschluss des Workshops sind die Teilnehmenden in der Lage:

  • die Grundprinzipien und den Mechanismus der CRISPR-Cas9-Genomeditierung zu verstehen
  • die Rolle von Cas9, gRNA, PAM-Sequenz und Ziel-DNA zu erklären
  • nachzuvollziehen, wie CRISPR-Cas9-Experimente konzipiert werden
  • geeignete Zielregionen auszuwählen und die Grundprinzipien des gRNA-Designs zu verstehen
  • BSL-2-Sicherheitsrichtlinien in Arbeitsabläufen der Genomeditierung anzuwenden
  • die Schritte der Reagenzienvorbereitung für CRISPR-Cas9-Experimente zu verstehen
  • sich mit Transfektionsmethoden und ihren Anwendungen vertraut zu machen
  • zentrale molekularbiologische Methoden wie DNA-Extraktion und PCR durchzuführen oder zu verfolgen
  • die Rolle der Gelelektrophorese bei der Analyse von CRISPR-Experimenten zu verstehen
  • grundlegende Ergebnisse CRISPR-bezogener Assays zu interpretieren
  • typische technische Herausforderungen bei CRISPR-Cas9-Experimenten zu erkennen
  • Strategien zur Fehlerbehebung in Versuchsplanung und Analyse anzuwenden

Zielgruppe

Dieser Kurs eignet sich besonders für:

  • Master-Studierende und Promovierende
  • wissenschaftliche Hilfskräfte und technische Assistentinnen und Assistenten
  • Studierende der Biotechnologie und der biomedizinischen Wissenschaften
  • Forschende, die neu in Technologien der Genomeditierung einsteigen
  • Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler aus Molekularbiologie, Zellbiologie, Genetik oder Biotechnologie
  • Fachkräfte, die praktische Einblicke in CRISPR-Cas9-Arbeitsabläufe gewinnen möchten
  • Teilnehmende, die sich auf Laborarbeit mit Geneditierung, PCR, DNA-Analyse oder Transfektionsmethoden vorbereiten

Kursprogramm

Tag 1: Einführung in CRISPR-Cas9 & Designprinzipien

Uhrzeit Inhalt Format
09:00–09:30 Einführung & Kursüberblick Vortrag
09:30–11:00 Einführung in die BSL-2-Richtlinien und Laborsicherheit Vortrag
11:00–11:15 Kaffeepause
11:15–12:30 CRISPR-Cas9-Theorie: Hintergrund, Mechanismus und Anwendungen Vortrag
12:30–13:30 Mittagspause
13:30–15:00 Auswahl der Zielsequenz und Prinzipien des Versuchsdesigns Vortrag / Workshop
15:00–15:15 Kaffeepause
15:15–16:30 Einführung in gRNA-Design-Tools und die Bewertung von Zielsequenzen Workshop
16:30–17:00 Gruppendiskussion, Fragen und Vorbereitung auf Tag 2 Diskussion & Fragerunde

Tag 2: Reagenzienvorbereitung & Transfektionsmethoden

Uhrzeit Inhalt Format
09:00–09:20 Begrüßung, Rückblick auf Tag 1 und Fragen Fragerunde
09:20–10:30 Vorbereitung der CRISPR-Cas9-Reagenzien: zentrale Komponenten und Ablaufplanung Vortrag / Demonstration
10:30–10:45 Kaffeepause
10:45–12:00 Vorbereitung der CRISPR-Cas9-Reagenzien: Praxisübung oder Demonstration Labor
12:00–13:00 Mittagspause
13:00–14:00 Einführung in Transfektionsmethoden und experimentelle Überlegungen Vortrag
14:00–15:30 CRISPR-Cas9-Transfektion: Versuchsaufbau und praktische Durchführung Labor
15:30–15:45 Kaffeepause
15:45–16:30 Einflussfaktoren auf Transfektionseffizienz und Zellvitalität Diskussion
16:30–17:00 Dokumentation, Diskussion zur Fehlerbehebung und Vorbereitung auf Tag 3 Diskussion & Fragerunde

Tag 3: Umgang mit DNA, PCR & Gelelektrophorese

Uhrzeit Inhalt Format
09:00–09:20 Begrüßung, Rückblick auf Tag 2 und Fragen Fragerunde
09:20–10:30 DNA-Extraktion und PCR: Theorie und Ablauf im Überblick Vortrag
10:30–11:00 Kaffeepause
11:00–12:00 DNA-Extraktion aus Zellproben Labor
12:00–13:00 Mittagspause
13:00–14:30 PCR-Ansatz, Amplifikationsstrategie und Probenvorbereitung Labor
14:30–15:15 Einführung in die Agarose-Gelelektrophorese Vortrag / Demonstration
15:15–15:30 Kaffeepause
15:30–16:30 Gelbeladung, Elektrophorese und Visualisierung der PCR-Produkte Labor
16:30–17:00 Dokumentation der Ergebnisse und Diskussion Diskussion & Fragerunde

Tag 4: Datenanalyse, Fehlerbehebung & wissenschaftliche Interpretation

Uhrzeit Inhalt Format
09:00–09:20 Begrüßung, Rückblick auf Tag 3 und Fragen Fragerunde
09:20–10:30 Einführung in die Analyse von CRISPR-Cas9-Ergebnissen Vortrag
10:30–10:45 Kaffeepause
10:45–12:00 Datenauswertung: Ergebnisse von PCR und Gelelektrophorese Workshop
12:00–13:00 Mittagspause
13:00–14:00 Typische Herausforderungen bei CRISPR-Cas9-Experimenten Vortrag & Diskussion
14:00–15:00 Fallstudien zur Fehlerbehebung: Design, Transfektion, PCR und Analyse Workshop
15:00–15:30 Gruppendiskussion und Reflexion der Versuchsplanung Diskussion
15:30–16:00 Abschlussquiz, Feedbackrunde und Informationen zum Zertifikat Fragerunde

Ihr Mehrwert

Die Teilnehmenden gewinnen:

  • ein praxisnahes Verständnis von Arbeitsabläufen der CRISPR-Cas9-Genomeditierung
  • Wissen über Theorie, Mechanismus und Versuchsdesign von CRISPR-Cas9
  • Erfahrung mit der Auswahl von Zielsequenzen und den Prinzipien des gRNA-Designs
  • Verständnis der Anforderungen an BSL-2-Sicherheit und steriles Arbeiten
  • Einblick in die Vorbereitung von CRISPR-Cas9-Reagenzien
  • praktische Erfahrung mit den Konzepten der Transfektion
  • praktische oder demonstrationsbasierte Erfahrung mit der DNA-Extraktion
  • praktisches Wissen zu PCR-Ansatz und Amplifikation
  • Verständnis der Gelelektrophorese und der Visualisierung von Ergebnissen
  • Grundkompetenzen in der Auswertung CRISPR-bezogener Daten
  • Strategien zur Behebung typischer Probleme bei CRISPR-Cas9-Experimenten
  • Vorbereitung auf künftige Arbeit in Genomeditierung, Molekularbiologie und biotechnologischer Forschung

Das sagen unsere Teilnehmenden

★★★★★5.0Basierend auf 1 Bewertung
★★★★★

Ich habe an einem viertägigen CRISPR-Praxiskurs teilgenommen, der sowohl zeitlich als auch inhaltlich sehr gut organisiert war. Vor dem Training erhielten die Teilnehmenden Unterlagen, um sich mit dem Thema vertraut zu machen – das war sehr hilfreich. Jedes Modul begann mit einer theoretischen Einführung, gefolgt von einer praktischen Demonstration und einer Übungseinheit, in der wir das Gelernte anwenden konnten.

Die Dozierenden waren sehr freundlich und hilfsbereit und nahmen sich Zeit für individuelle Fragen und Herausforderungen. Toll ist auch, dass man sich nach dem Kurs bei weiteren Fragen oder für Unterstützung an die XTech Academy wenden kann.

Das Labor war modern und gut ausgestattet und bot eine hervorragende Lernumgebung. Im Gebäude gab es außerdem eine gemütliche Lounge, in der man sich zwischen den Einheiten frei mit Getränken und Obst versorgen und sogar etwas zu essen zubereiten konnte.

Insgesamt war es eine großartige Lernerfahrung und eine ausgezeichnete Gelegenheit, praktische Kompetenzen in der CRISPR-Technologie zu vertiefen.

Felix DornKursteilnehmer · CRISPR-Cas9-Trainingsprogramm

Bewertungen stammen von Teilnehmenden unserer Kurse und werden unverändert veröffentlicht. Diese Bewertung wurde auf Englisch verfasst und ins Deutsche übersetzt.

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