Kursdetails
Überblick
Dieser intensive dreitägige Praxisworkshop zur Zellkultur richtet sich an Studierende, Forschende, technische Assistentinnen und Assistenten sowie Fachkräfte, die praktische Erfahrung mit Methoden der Säugerzellkultur sammeln möchten.
Der Kurs behandelt sowohl adhärente als auch Suspensionszellkulturen und führt die Teilnehmenden durch den gesamten Arbeitsablauf: von den Sicherheitsgrundsätzen der Schutzstufe BSL-2 und aseptischem Arbeiten über das Auftauen, Aussäen, Passagieren und Zählen von Zellen bis hin zu Vitalitätstests und Fehlerbehebung.
Die Teilnehmenden arbeiten direkt im Labor und üben die grundlegenden Techniken, die für selbstständiges Arbeiten in der Zellkultur erforderlich sind. Der Workshop verbindet theoretische Grundlagen mit praktischer Übung und stärkt so die Sicherheit im sterilen Arbeiten, in der Versuchsplanung und in der Datenauswertung.
Am Ende des Kurses verfügen die Teilnehmenden über ein solides Fundament in der routinemäßigen Säugerzellkultur und können grundlegende Zellkulturabläufe sicher und selbstständig durchführen.
Lernziele
Nach Abschluss des Workshops sind die Teilnehmenden in der Lage:
- die Grundprinzipien der Säugerzellkultur zu verstehen
- die Sicherheitsrichtlinien für BSL-2-Labore anzuwenden
- aseptisch an der Sicherheitswerkbank zu arbeiten
- mit adhärenten und Suspensionszellen umzugehen
- Säugerzellen aufzutauen, auszusäen und zu kultivieren
- Zellen mit geeigneten Methoden zu passagieren
- Zellen manuell zu zählen und die Prinzipien der automatisierten Zellzählung zu verstehen
- die Zellvitalität mittels Trypanblau- und MTT-basierter Methoden zu bestimmen
- typische Kontaminationsrisiken und technische Probleme zu erkennen
- grundlegende Probleme in der Zellkultur zu beheben
- einfache Zellkulturergebnisse auszuwerten und Experimente korrekt zu dokumentieren
Zielgruppe
Dieser Kurs eignet sich besonders für:
- Master-Studierende und Promovierende
- wissenschaftliche Hilfskräfte und technische Assistentinnen und Assistenten
- Forschende am Anfang ihrer Laufbahn
- Studierende der Biotechnologie und der biomedizinischen Wissenschaften
- Fachkräfte, die in zellkulturbasierte Laborarbeit einsteigen
- Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler, die ihre Grundkenntnisse in der Zellkultur auffrischen oder vertiefen möchten
- Teilnehmende, die sich auf Laborarbeit in Hochschule, Biotechnologie oder pharmazeutischer Forschung vorbereiten
Kursprogramm
Tag 1: BSL-2-Sicherheit, aseptisches Arbeiten & Grundlagen der Zellaussaat
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 09:00–09:30 | Einführung & Kursüberblick | Vortrag |
| 09:30–10:30 | Einführung in die BSL-2-Richtlinien und Laborsicherheit | Vortrag |
| 10:30–10:45 | Kaffeepause | |
| 10:45–12:00 | Grundlagen der Säugerzellkultur: adhärente vs. Suspensionszellen | Vortrag |
| 12:00–12:30 | Einführung in aseptisches Arbeiten und die Arbeit an der Sicherheitswerkbank | Demonstration |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–15:00 | Auftauen und Regeneration von Zellen: Vorbereitung der Zellen für die Kultur | Labor |
| 15:00–15:15 | Kaffeepause | |
| 15:15–16:30 | Praktische Zellaussaat: adhärente und Suspensionszellsysteme | Labor |
| 16:30–17:00 | Versuchsdokumentation, Diskussion & Vorbereitung auf Tag 2 | Diskussion & Fragerunde |
Tag 2: Passagieren, Zellzählung & Vitalitätsbestimmung
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 09:00–09:20 | Begrüßung, Rückblick auf Tag 1 und Fragen | Fragerunde |
| 09:20–10:30 | Grundlagen des Passagierens und der Kulturpflege | Vortrag |
| 10:30–10:45 | Kaffeepause | |
| 10:45–12:00 | Passagieren adhärenter Zellen: Trypsinierung und erneute Aussaat | Labor |
| 12:00–12:30 | Handhabung und Kultivierung von Suspensionszellen | Labor |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–14:30 | Manuelle Zellzählung mit der Zählkammer (Hämozytometer) | Labor |
| 14:30–15:15 | Einführung in die automatisierte Zellzählung und Methodenvergleich | Demonstration |
| 15:15–15:30 | Kaffeepause | |
| 15:30–16:30 | Bestimmung der Zellvitalität mit Trypanblau | Labor |
| 16:30–17:00 | Datenerfassung, Rechenübungen & Diskussion zur Fehlerbehebung | Diskussion & Fragerunde |
Tag 3: Sicheres Arbeiten an der Werkbank, Vitalitätsassays, Fehlerbehebung & Auswertung
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 09:00–09:20 | Begrüßung, Rückblick auf Tag 2 und Fragen | Fragerunde |
| 09:20–10:30 | Verfeinerung der Werkbanktechnik: Best Practices für steriles Arbeiten | Labor |
| 10:30–10:45 | Kaffeepause | |
| 10:45–12:00 | Typische Probleme in der Zellkultur: Kontamination, schlechtes Wachstum, Zelltod und Handhabungsfehler | Vortrag & Diskussion |
| 12:00–12:30 | Einführung in den MTT-Assay und Messgrößen der Zellvitalität | Vortrag |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–14:45 | MTT-Assay-Ablauf oder demonstrationsbasierte Vitalitätsanalyse | Labor / Demonstration |
| 14:45–15:30 | Workshop Datenauswertung: Ergebnisse zu Zellwachstum und Vitalität verstehen | Workshop |
| 15:30–15:45 | Kaffeepause | |
| 15:45–16:30 | Fallstudien zur Fehlerbehebung und Gruppendiskussion | Diskussion |
| 16:30–17:00 | Abschlussquiz, Feedbackrunde und Informationen zum Zertifikat | Fragerunde |
Ihr Mehrwert
Die Teilnehmenden gewinnen:
- praktische Erfahrung mit Arbeitsabläufen der Säugerzellkultur
- praktische Laborkompetenz im sterilen und aseptischen Arbeiten
- Sicherheit beim Arbeiten an der Sicherheitswerkbank
- Erfahrung mit adhärenten und Suspensionszellsystemen
- praktisches Wissen zum Auftauen, Aussäen, Passagieren und Kultivieren von Zellen
- Erfahrung in manueller Zellzählung und Vitalitätsbestimmung
- Verständnis von Trypanblau- und MTT-basierten Vitalitätsassays
- Strategien zur Behebung typischer Probleme in der Zellkultur
- ein besseres Verständnis von Dokumentation und Datenauswertung in der Zellkultur
- Vorbereitung auf selbstständige Laborarbeit in Wissenschaft und Industrie
