Kursdetails
Überblick
Erleben Sie die nächste Generation der Zellbiologie in unserem intensiven dreitägigen Praxisworkshop zur 3D-Zellkultur. Er richtet sich an Studierende, Forschende und Fachkräfte, die praktische Erfahrung mit modernen In-vitro-Modellen sammeln möchten, wie sie in Biotechnologie, Krebsforschung, Wirkstoffentwicklung und regenerativer Medizin eingesetzt werden.
Herkömmliche 2D-Zellkultursysteme bilden die Komplexität lebender Gewebe oft nur unzureichend ab. 3D-Zellkulturmodelle wie Sphäroide und Mikrogewebesysteme bieten dagegen physiologisch relevantere Bedingungen und geben Zell-Zell-Interaktionen, Gewebearchitektur, Nährstoffgradienten und Wirkstoffantworten, wie sie in vivo auftreten, deutlich besser wieder. Diese fortschrittlichen Systeme werden in translationaler Forschung, Toxikologie, Immuntherapieentwicklung und Präzisionsmedizin zunehmend unverzichtbar.
Im Workshop erwerben die Teilnehmenden sowohl theoretisches Verständnis als auch praktische Laborerfahrung in Herstellung, Handhabung, Färbung, Bildgebung und Auswertung von 3D-Zellkulturmodellen. Der Kurs verbindet Zellkulturtechniken, Fluoreszenzmikroskopie, konfokale Bildgebung, Lebend/Tot-Färbung und experimentelle Auswertung in einer äußerst interaktiven Lernumgebung.
Die Teilnehmenden arbeiten direkt mit verschiedenen 3D-Kulturplattformen, darunter Hanging-Drop-Systeme, Mikrokavitäten-Arrays und spezielle 96-Well-Platten. Während des gesamten Kurses dokumentieren und analysieren sie ihre eigenen Experimente und lernen, typische technische Herausforderungen bei 3D-Kulturen zu lösen.
Lernziele
Nach Abschluss des Workshops sind die Teilnehmenden in der Lage:
- die biologischen Vorteile und Grenzen von 3D-Zellkultursystemen zu verstehen
- Sphäroide mit verschiedenen Kulturplattformen herzustellen und zu kultivieren
- Lebend/Tot-Färbungen und fluoreszenzbasierte Analysen durchzuführen
- Fluoreszenz- und Konfokalmikroskope zu bedienen
- 3D-Kulturexperimente zu bewerten und Fehler zu beheben
- Bildgebungsergebnisse zu interpretieren und wissenschaftliche Erkenntnisse überzeugend zu kommunizieren
- aktuelle Anwendungen von Sphäroiden, Organoiden und Organ-on-Chip-Technologien in der biomedizinischen Forschung zu verstehen
Zielgruppe
Dieser Kurs eignet sich besonders für:
- Master-Studierende und Promovierende
- wissenschaftliche Hilfskräfte und technische Assistentinnen und Assistenten
- Forschende aus Biotechnologie und Biomedizin
- Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler, die auf fortgeschrittene Zellkulturtechnologien umsteigen
- Fachkräfte aus der Industrie mit Interesse an Wirkstoffforschung, Krebsforschung und Tissue Engineering
Kursprogramm
Tag 1: Einführung in die 3D-Zellkultur
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 08:00–08:15 | Einführung & Kursüberblick | Vortrag |
| 08:15–09:15 | Einführung in die BSL-2-Richtlinien | Vortrag |
| 09:15–10:00 | Grundlagen 2D- vs. 3D-Zellkultur, Sicherheit und Laborpraxis | Vortrag |
| 10:00–10:30 | Auffrischung Zellkultur: Ernten, Zählen und Einstellen der Zelldichte | Labor |
| 10:30–12:30 | Aussaat von 3D-Kulturen: Alle Teilnehmenden setzen je 1 Hanging-Drop-Platte (10-cm-Petrischale), 1 MicroSphere-Array und 1 Reihe einer faCellitate-96-Well-Platte an | Labor |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–14:00 | Geschichte und Landschaft der 3D-Zellkultur: Von einfachen Aggregaten zu Organoiden und Organ-on-Chip-Systemen | Vortrag |
| 14:00–15:00 | Block 1 (geteilte Gruppen) • Gruppe A: Trypsinieren und Zellzählung an eigenen 2D-Kulturflaschen • Gruppe B: Einführung in das Fluoreszenz-/Konfokalmikroskop (Bedienelemente, Fokus, Filter, Best Practices) | Labor |
| 15:00–15:15 | Kaffeepause | |
| 15:15–16:15 | Block 2 (Gruppenwechsel) • Gruppe B: Trypsinieren und Zellzählung an eigenen 2D-Kulturflaschen • Gruppe A: Einführung in das Fluoreszenz-/Konfokalmikroskop | Labor |
| 16:15–16:45 | Versuchsdokumentation und Ausblick: Erfassung der Aussaatparameter, Gruppendiskussion, Fragerunde und Vorbereitung auf Tag 2 | Diskussion & Fragerunde |
Tag 2: 3D-Zellmodelle erkunden: Färbung, Bildgebung & Auswertung
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 09:00–09:20 | Begrüßung, Rückblick auf Tag 1, Laborplanung & Fragen | Fragerunde |
| 09:20–10:00 | Grundlagen der Fluoreszenzmikroskopie | Vortrag |
| 10:00–10:45 | Begutachtung der eigenen 3D-Kulturen | Labor |
| 10:45–11:00 | Kaffeepause | |
| 11:00–12:30 | Lebend/Tot-Färbung von durch die Trainer vorbereiteten 72-Stunden-Sphäroiden: HepG2-GFP + PI + Hoechst oder alternativ CellTracker Green + PI + Hoechst | Labor |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–15:30 | Fluoreszenzbildgebung (je nach Gruppengröße in geteilten Gruppen mit parallelen Theorieeinheiten) | Labor |
| 15:30–16:30 | 3D-Messgrößen und Assay-Optionen; Gruppendiskussion: Beobachtungen, typische Artefakte und Fehlerbehebung bei 3D-Kulturen | Vortrag & Diskussion |
Tag 3: Von der Bildgebung zur Erkenntnis: Analyse & wissenschaftliche Kommunikation
| Uhrzeit | Inhalt | Format |
|---|---|---|
| 09:00–09:20 | Begrüßung & offene Fragen | Fragerunde |
| 09:20–10:30 | Hellfeldbildgebung & Färbung | Labor |
| 10:30–10:45 | Kaffeepause | |
| 10:45–12:30 | Fluoreszenzbildgebung (abhängig von Dauer und Probenverfügbarkeit) | Labor |
| 12:30–13:30 | Mittagspause | |
| 13:30–14:30 | Vorbereitung kurzer Gruppenpräsentationen (optional zusätzliche Fluoreszenzbildgebung) | Theorie |
| 14:30–15:30 | Gruppenpräsentationen & wissenschaftliche Diskussion | Theorie |
| 15:30–16:00 | Abschluss, Feedbackrunde & Informationen zum Zertifikat | Fragerunde |
Ihr Mehrwert
- praktische Erfahrung mit mehreren 3D-Kulturplattformen
- praktische Laborkompetenz in der Herstellung und Kultivierung von Sphäroiden
- Einführung in die Fluoreszenz- und Konfokalmikroskopie
- Erfahrung mit Arbeitsabläufen der Lebend/Tot-Färbung
- Strategien zur Versuchsplanung und Fehlerbehebung
- Kompetenzen in wissenschaftlicher Dokumentation und Datenauswertung
- Einblick in moderne Anwendungen in Krebsbiologie, Wirkstoffscreening, Organoid- und Organ-on-Chip-Technologien
